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在动物实验中，常常需要将药物注入动物体内，以便于后期观察药物对机体的影响。然而，文献中常常仅标注着i.v.、i.m.、i.d.、i.h.、i.p.等缩写词，也没有详细描述具体的操作步骤，使得初入实验室的小白无语凝噎。本篇着重阐述常用注射给药方法的操作步骤，大家快快分享起来吧~

 

 

1. 皮下注射（s.c.）

    注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。一般来说，皮下注射的吸收速率通常均匀而缓慢，因而作用持久。仅适用于对组织无刺激性的药物，否则可引起剧烈疼痛和组织坏死。

 

    以小白鼠为例，将小白鼠放在笼盒盖上，用左手小指和无名指捏住鼠尾，轻轻向后拉，用拇指和食指捏起背部皮肤，再用右手持注射器，右手将注射器的针头水平刺入背部皮下。推送药液使注射部位隆起。拔针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。

 

 

2. 皮内注射（i.d.）

    此法常用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。

一般步骤：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，当针头不能左右摆动时，即表明针头在皮内，回抽无回流后，即可缓慢注射。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘，若隆起可维持一定时间，则证明药液确实注射在皮内。

 

 

3. 肌肉注射（i.m.）

    当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位。注射时针头要垂直快速刺入肌肉，回抽针栓如无回血现象即可注射。

 

4. 腹腔注射（i.p.）

    此法大/小鼠用的较多。给大/小鼠进行腹腔注射时，一般以左手固定动物，腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位，内脏移向上腹。先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，右手持注射器从下腹两侧向头部方向刺入，控制针头与腹部的角度，不宜太小，否则易误入皮下。针头亦不宜刺入太深或太近上腹部，以避免损伤内脏。然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，再使针头与皮肤呈45度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。

 

5. 静脉注射（i.v.）

    将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。

一般步骤：

    1）大/小鼠：鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。开始注射时宜少量缓注，如无阻力，表示针头已进入静脉，这时用左手指将针和尾一起固定起来，解除对尾根部的压迫后，便可进行注射。如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾部方向移动针头再次穿刺。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，尽量从尾的末端开始。

    2）兔：注射部位除毛，用75％酒精消毒，手指轻弹兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近心端，拇指绷紧静脉的远心端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器，尽量从静脉的远端刺入血管，移动拇指于针头上以固定，放开食、中指，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻以止血。

 

 

   

※ 以上方法和图片均来自网络/文献中的公开资料，仅供参考交流之用，具体方案仍需根据实验动物、动物身体情况、实验试剂、溶液状态、实验环境、实验目的、实验条件等实际情况进行调整。

   

 

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1. IL2020：脂多糖（LPS）

 

 

 

 

 

2. IS0250：链脲佐菌素

 

 

 

 

 

 

   

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